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NOG-ΔMHC マウス

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NOG-ΔMHCマウス

次世代重度免疫不全 NOG-ΔMHC マウス

次世代重度免疫不全 NOG-ΔMHC マウス
系統名(カルタヘナ情報) マウス NOG-Iab KO, B2m KO2
系統名(略称) NOG-ΔMHCマウス
  • ご購入にあたりまして使用同意書(NOG-ΔMHC)へのご署名が必要となります。
  • NOG-ΔMHCマウスは、日本国内で生産しお届けします。
  • NOG-ΔMHCマウスをご購入後、お客様の施設で臍帯血由来造血幹細胞(HSC)や末梢血単核球細胞(PBMC)を移入し、ヒト化マウスを作製使用することが可能です。
  • 妊娠マウスの納品が可能です。
開発

ゲノム編集により樹立したNOG-B2m<em1Tac>マウスと、NOG-H2-Ab1<tm1Doi>マウスとの交配により樹立しました。

特徴
  • 重度免疫不全マウスであるNOGマウスのMHC(ClassⅠ,ClassⅡ)を欠損させたマウスです。
  • hPBMC移入後のXenogenicなGraft Versus Host Disease(GVHD)が緩和され、長期の試験が可能になりました。今までのNOGマウスではヒトPBMC移入後1ヶ月程度でGVHDを発症していましたが、より長く3ヶ月程度の観察が可能です。
研究用途
  • ヒトPBMC移入ヒト化マウスを用いた、担がん後の免疫チェックポイント阻害剤の薬効評価等の研究。
  • 担がん後のCAR-TやTCR-T細胞等で抗腫瘍効果を評価する長期の移植実験。
    論文1 論文2
  • EBVの感染モデルとしての研究(ヒトPBMC移入ヒト化マウス)。
背景データ
生産と供給
  • 日本クレア株式会社に生産を委託し、日本国内で生産しています。
  • AAALAC認証を含む国内第三者認証をうけた生産施設で生産しています。
    日本クレア株式会社動物福祉への取り組みはこちら
  • 動物の輸送は、温度管理された専用車両により行います。
NOG-ΔMHCマウスの動画

NOG-ΔMHCマウスの開発経緯、およびPBMCを移入したNOG-ΔMHCマウス(ヒト化マウス)の特徴、主な研究用途をご紹介します。

ヒト化 NOG-ΔMHC マウス

  • ヒト末梢血単核球細胞(PBMC)を移入したモデルが汎用されています。
  • 弊社は、日本国内でヒト化NOG-ΔMHCマウスを作製し、お客様にお届けしています。
  • 生産は、ご注文をいただいた後開始します。
  • また、ヒトPBMCを移入・ヒト化NOG-ΔMHCマウスに担がんしたモデルを使用した薬効試験を受託いたします(注1)
  • CAR-Tなどお客様が提供される細胞を移植して作製したモデルを使った受託試験も可能です。
  • ご購入にあたりまして使用同意書(NOG-ΔMHC)へのご署名が必要となります。

(注1)通常、がん細胞株(またはPDX腫瘍)はお客様に準備していただいておりますが、購入可能な細胞の場合は弊社で購入することも可能です。

PBMC移入ヒト化NOG-ΔMHCマウスの特徴
  • 重度免疫不全マウスであるNOGマウスのMHC(ClassⅠ,ClassⅡ)を欠損させたマウスです。
  • hPBMC移入後のXenogenicなGraft Versus Host Disease(GVHD)が緩和され、長期の試験が可能になりました。
  • 今までのNOGマウスではヒトPBMC移植後1ヶ月程度でGVHDを発症していましたが、より長く3ヶ月程度の観察が可能になりました。
  • ヒト化マウスの特徴、ヒト化マウス作製及び使用実験プロトコールに関しまして、詳細な説明会をオンラインを通して提供させていただいております。
  • ご希望のお客様は、こちらまでお気軽にご連絡をいただけますようお願い申し上げます。
PBMC移入ヒト化NOG-ΔMHCマウスの背景データ

文献集

Therapeutic effects of anti-GM2 CAR T cells expressing IL 7 and CCL19 for GM2 positive solid cancer in xenograft model.(CAR-T cell; chemokine; cytokine; ganglioside; solid cancers; NOG ΔMHC mice)
Cancer Med. 2023 Jun;12(11):12569 12580. doi: 10.1002/cam4.5907. Epub 2023 Apr 9.
Takahiro Sasaki, Yukimi Sakoda, Keishi Adachi, Yoshihiro Tokunaga, Koji Tamada

Improved anti-solid tumor response by humanized anti podoplanin chimeric antigen receptor transduced human cytotoxic T cells in an animal model.(CAR-T cells; chimeric antigen receptor; humanized antibody; podoplanin ; solid tumor; NOG ΔMHC mice)
Genes Cells. 2022 Sep;27(9):549 558. doi: 10.1111/gtc.12972. Epub 2022 Jul 17.
Akihiro Ishikawa, Masazumi Waseda , Tomoko Ishii, Mika K Kaneko, Yukinari Kato, Shin Kaneko

A T-cell-engaging B7-H4/CD3-bispecific Fab-scFv Antibody Targets Human Breast Cancer (ΔMHC, Breast cancer)
Clin Cancer Res. 2019 May 1;25(9):2925-2934. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-17-3123. Epub 2019 Feb 8.
Akira Iizuka, Chizu Nonomura, Tadashi Ashizawa, Ryota Kondou, Keiichi Ohshima, Takashi Sugino, Koichi Mitsuya, Nakamasa Hayashi, Yoko Nakasu, Kouji Maruyama, Ken Yamaguchi, Yasuto Akiyama

Human PBMC-transferred murine MHC class I/II-deficient NOG mice enable long-term evaluation of human immune responses.(PBMC-NOG-dKO, Cancer Immune therapy)
Cell Mol Immunol. 2018 Nov;15(11):953-962. doi: 10.1038/cmi.2017.106. Epub 2017 Nov 20
Tomonori Yaguchi, Asuka Kobayashi, Takashi Inozume, Kenji Morii, Haruna Nahgumo, Hiroshi Nishio, Takashi Iwata, Yuyo Ka, Ikumi Katano, Ryoji Ito, Mamoru Ito, Yutaka Kawakami

Alloreactive T Cells Display a Distinct Chemokine Profile in Response to Conditioning in Xenogeneic GVHD Models.(NOG, NOG-ΔMHC, GVHD models)
Transplantation. 2019 Sep;103(9):1834-1843. doi:10.1097/TP.0000000000002756.
Kawasaki Y, Sato K, Nakano H, Hayakawa H, Izawa J, Takayama N, Mashima K, Oh I, Minakata D, Yamasaki R, Morita K, Ashizawa M, Yamamoto C, Hatano K, Fujiwara SI, Ohmine K, Muroi K, Ito R, Hayakawa M, Ohmori T, Kanda Y.

Antitumor Effect of Programmed Death-1 (PD-1) Blockade in Humanized the NOG-MHC Double Knockout Mouse. (humanized mice, NOG-ΔMHC, Immune checkpoint inhibitor)
Clin Cancer Res. 2017 Jan 1;23(1):149-158. doi: 10.1158/1078-0432.CCR-16-0122. Epub 2016 Jul 25.
Ashizawa T, Iizuka A, Nonomura C, Kondou R, Maeda C, Miyata H, Sugino T, Mitsuya K, Hayashi N, Nakasu Y, Maruyama K, Yamaguchi K, Katano I, Ito M, Akiyama Y.

The anti-tumor activity of the STAT3 inhibitor STX-0119 occurs via promotion of tumor-infiltrating lymphocyte accumulation in temozolomide-resistant glioblastoma cell line. (glioblastoma, NOG-ΔMHC)
Immunol Lett. 2017 Oct;190:20-25. doi: 10.1016/j.imlet.2017.07.005. Epub 2017 Jul 15.
Akiyama Y, Nonomura C, Ashizawa T, Iizuka A, Kondou R, Miyata H, Sugino T, Mitsuya K, Hayashi N, Nakasu Y, Asai A, Ito M, Kiyohara Y, Yamaguchi K.

Improved engraftment of human peripheral blood mononuclear cells in NOG MHC double knockout mice generated using CRISPR/Cas9. (hu-PBMC engraftment, humanized NOG-ΔMHC mice)
Immunol Lett. 2021 Jan;229:55-61. doi: 10.1016/j.imlet.2020.11.011. Epub 2020 Nov 27.
Ka Y, Katano I, Nishinaka E, Welcker J, Mochizuki M, Kawai K, Goto M, Tomiyama K, Ogura T, Yamamoto T, Ito M, Ito R, Takahashi R.

Antitumor activity of the PD-1/PD-L1 binding inhibitor BMS-202 in the humanized MHC-double knockout NOG mouse. (PBMC-NOG-dKO, Cancer Immune therapy)
Biomed Res. 2019;40(6):243-250. doi: 10.2220/biomedres.40.243.
Ashizawa T, Iizuka A, Tanaka E, Kondou R, Miyata H, Maeda C, Sugino T, Yamaguchi K, Ando T, Ishikawa Y, Ito M, Akiyama Y.

Immunological responses against hepatitis B virus in human peripheral blood mononuclear cell-engrafted mice. (HBV, PBMC-humanized mice, NOG-ΔMHC)
Biochem Biophys Res Commun. 2018 Sep 10;503(3):1457-1464. doi: 10.1016/j.bbrc.2018.07.063. Epub 2018 Jul 20.
Aono S, Tatsumi T, Yoshioka T, Tawara S, Nishio A, Onishi Y, Fukutomi K, Nakabori T, Kodama T, Shigekawa M, Hikita H, Sakamori R, Takahashi T, Suemizu H, Takehara T.